اصول نمونه گیری

اصول نمونه گیری

اسلاید 1: به نام خالق هستياصول نمونه گیری

اسلاید 2: مدیریت نمونه در آزمايشگاه هاي پزشكي نتايج آزمايش­ها تحت تاثير متغيرهای گوناگونی است :مراحل قبل از آزمايش preanalyticalحین آزمايش analytical پس از آزمايش poatanalyticalشناسايی این متغیرها واستاندارد نمودن روش­های آزمايشگاهی جهت تفسير و استفاده بهينه از داده­های آزمايشگاهی ضروری است.

اسلاید 3: تاکيد بر اجرای روش­های کنترل کيفی در کليه بخش­های آزمايشگاه در مرحله حين آزمايش و به­دنبال آن برگزاری دوره­های آموزشی در اين خصوص، خطاهای حين آزمايش به حداقل رسيده است و لذا تاثير متغيرهای قبل و بعد از آزمايش بسيار پررنگ شده است.

اسلاید 4: نمونه خون

اسلاید 5: دستورالعمل نمونه گيري وريدي ومويرگي

اسلاید 6: انطباق مشخصات برگه درخواست آزمایش با مشخصات بیمار بیمار سرپایی : با سئوال وجواب از بیمار و مشاهده کارت شناسایی بیمار بستری : نمونه گیر نباید فقط به برچسب بالای تخت یا یادداشت کنار تخت وی اکتفا کند.در صورت هوشیاری این انطباق با کمک او و در صورت عدم هوشیاری بیمار این امر با کمک همراه بیمار یا پرستار باید صورت پذیرد.

اسلاید 7: . اطمینان از آماد گی لازم برای تست درخواستی پیش از نمونه گیری : بعضی از آزمایشات نیاز به رعایت ناشتا بودن ویا حذف بعضی از مواد از رژیم غذایی قبل از خون گیری دارند.HDL و TG (تری گلیسرید):بیمار باید از سه هفته قبل رژیم غذایی ثابت داشته باشد و از سه روز قبل از نمونه گیری الکل مصرف نکرده باشد و حداقل از 24 ساعت قبل نیز ورزش سنگین انجام نداده باشد. Phenylketonuria):نوزاد باید تغذیه مطلوب (پروتئین) به مدت 48 ساعت قبل از ازمایش داشته باشد.Metanephrines,urine or plasma :بیماران از مصرف تمامی غذاهای حاوی متیل گزانتین نظیر شکلات-قهوه-چای و نوشابه ها به مدت 24 ساعت منع شوند.

اسلاید 8: رعایت اصول آماده سازی بیمار: فعالیت بدنی شدید سبب افزایش آنزیمهای AST,ALT می گردد و بایداجتناب گردد.Calcium ionized,serum : بیمار باید برای 30 دقیقه قبل از نمونه گیری دراز بکشد.:Glucose, CSF از آنجائیکه برای اندازه گیری گلوکز CSF ، گلوکز سرم یکبار باید چک شود.حالت مطلوب ان است که قند سرم 2 ساعت قبل از انجام ازمایش بر روی CSF اندازه گیری شود.PSA,serum:بیمار نباید اخیرامعاینه رکتال(DRE)و یا بیوپسی سوزنی پروستات شده باشدProlactin:باورزش ،درد و استرس ونيز بعد از غذا خوردن افزايش مي يابد.با توجه به ريتم سيركادين توصيه مي شود 3تا4 ساعت بعداز بيدار شدن وبين ساعت 8تا10 صبح نمونه گرفته شود.

اسلاید 9: آزمایشاتی که انجام آنها الزاما نیاز به ناشتا بودن بیمار دارد: -FBS قند ناشتا-HDL ,TG,Serum or Plasma (ناشتایی 14-10ساعت)-Iron Serum آهن سرم:چون اهن تحت تاثیرات ریتم شبانه روزی بوده(سطح اهن سرم در عصر پایین تر است) نمونه باید درحالت ناشتا و صبح گرفته شود-Alkaline phosphatase Serum-Lipase, Serum-PTH Serum -Leptin Serum( (12 ساعت ناشتایی

اسلاید 10: آزمایشاتی که بیمار ترجیحا باید ناشتا باشد: -Ca,P-GGT,serum-PSA,serum-IGF-1,serum or plasma-Cholestrol,serum or plasma-Insulin,serum-Amylase,urineChloride, serum -

اسلاید 11: ازمایشاتی که انجام انها نیازمند رعایت رژیم داروئی است: BT)Bleeding time ):منع مصرف اسپرین و داروهای مشابه در طی هفته قبل از ازمایش.PT,PTT :از انجائیکه هپارین علاوه بر طولانی کردن PTT در درجات کمتری PT را نیز طولانی می کند. :در بیماران تحت درمان با هپارین بهترین زمان نمونه گیری 30 دقیقه تا یک ساعت قبل از دوز بعدی هپارین است.کورتیزول serum,urine : منع مصرف اسپیرنولاکتون و نداشتن استرسفریتین سرم: هنگامیکه بیمار تحت درمان با آهن است تعیین فریتین سرم قابل اعتماد نخواهد بود.GTT,Plasma : بسیاری از داروها از جمله کورتیکواستروئیدها ، دیورتیکها ، داروهای ضدسل وضدالتهاب وداروهای ضدتشنج تداخل ایجاد می کنند. PH,stool: منع استفاده از مسهل ها و روشهای تشخیص با باریم تا یک هفته قبل

اسلاید 12: GTT دربیماران غیر حامله :بعد از یک نمونه گیری ناشتا محلول گلوکز مصرف می شود(75گرم در بالغین وmg/kg 1.75در اطفال)ودو ساعت بعد نمونه گیری صورت می گیرد.بیمار باید نشسته باشد و غیر از آب چیزی نخورد.فعالیت فیزیکی باید در حداقل باشد .استفراغ و یا اسهال ممکن است نتایج آزمایش را تغییر دهد.

اسلاید 13: GTT دربیماران حامله :دربیماران حامله برای انجام GCT نیازی به ناشتایی ندارند.50گرم پودر گلوکز به صورت خوراكي مصرف می شودوبعداز یک ساعت نمونه خون گرفته می شود. درصورتیکه نتیجه بیشتر از 140 mg/dl باشد ،آزمایش غربالگری دیابت حاملگی مثبت تلقی می شودوآزمایش GTT با 100گرم پودر گلوکز ونمونه گیریهای ناشتا ، یک ،دو و سه ساعت بعد از بلع گلوکز تکرار می شود.

اسلاید 14: نمونه گیری آزمایشات انعقادی(PT,PTT): خطای کم بودن حجم نمونه : نسبت حجم ماده ضد انعقاد به خون در لوله آزمایش (یک به نه است).در صورت بیشتر بودن حجم ماده ضد انعقاد PT,PTT به طور کاذب طولانی می شود.خطای مخلوط نکردن آهسته نمونه بلافاصله پس از خونگیری: باید پس از اتمام خونگیری بطور آهسته 4-3 بار نمونه را مخلوط کرد در غیر اینصورت لخته تشکیل می شودو PT,PTT بطور کاذب طولانی می شود.خطای تکان دادن شدید نمونه : باعث همولیز و فعال شدن پلاکتها می شود و PT,PTT بطور کاذب کوتاه می شوند. خطای بروز همولیز در نمونه: وجود همولیز به دلایل مختلف از جمله بکار بردن سوزن باریک باعث کوتاه شدن کاذب PT,PTT می شود. 

اسلاید 15: انجام نمونه گیریبرای قابل مقایسه بودن نتایج بهتر است نمونه گیری همیشه در یک وضعیت مشخص(مثلا خوابیده)صورت گیرد.در زمان نمونه گیری بیمار نباید غذا،مایعات،آدامس یا دماسنج در دهان خود داشته باشد.باید توجه داشت که بیمار نباید مشت خود را باز وبسته نماید زیرا باعث تغییر بعضی مواد در خون می شود(از جمله غلظت پتاسیم،لاکتات و فسفر افزایش یافته که با افزایش لاکتات ،PH خون کاهش و غلظت کلسیم یونیزه نیز افزایش می یابد.)

اسلاید 16: بستن تورنیکهتورنیکت باید 10-5/7 سانتی متر بالای ناحیه نمونه گیری بسته شود ونباید بیشتر از یک دقیقه یر روی بازوی بیمار بسته بماند،در اندازه گیری لاکتات سرم،نمونه گیری باید بدون بستن تورنیکت انجام شود .همچنین توصیه می شود نمونه گیری CPK وLDH نیز بدون کاربرد تورنیکت باشد.ازجمله بستن طولانی مدت تورنیکت باعث افزایش کلسترول ، تری گلیسرید،البومين، کلسیم وآهن سرم می شود)(

اسلاید 17: ضدانعقاد EDTA CBC(K2EDTA لوله با درب بنفش حاوی- K3EDTA لوله با درب سبزحاوی ) Hb,HctPeripheral blood smear, Reticulocyte count, Sickle Cell Test ,G6PD,LE cell, NBT Cyclosporine,HAM,HbA1C,HbA2,electrophoresisپلاسماACTH :از سرنگ سرد شده و لوله درب بنفش (EDTA )که از قبل در یخ سرد شده استفاده نمایید(چونACTH جذب شیشه میشود) 

اسلاید 18: سیترات سدیم PT,PTT (نسبت خون به ضد انعقاد 9به1) – D-DimerESR (نسبت خون به ضد انعقاد : 4به 1 Lupus Anticoagolant

اسلاید 19: هپارین ABG , VBG(0/05 میلی لیتر هپارین برای هرمیلی لیتر خون )نمونه های ABG وVBGباید در ظرف حاوی آب و یخ به آزمایشگاه ارسال شوند.OFTتست شکنندگی اسموتیک وجود هپارین زیادی احتمالا شایع ترین علت خطای پره انالتیک در اندازه گیری گازهای خونی است.

اسلاید 20: انتقال نمونه به لوله مناسبنمونه‌هايي كه در لوله‌هاي حاوي ماده ضد انعقاد ريخته مي‌شوند بايد بلافاصله و به آرامي 5 تا 10 بار مخلوط شوند. در صورتيكه نمونه در لوله بدون ماده ضد انعقاد ريخته مي‌شود بايد به آرامي در جدار داخلي لوله تخليه گردد.

اسلاید 21: ترتیب پر کردن لوله ها -لوله کشت خون-لوله خشک یا فاقد ضد انعقاد برای آزمایشات شیمی-لوله سیتراته برای آزمایشات انعقادی وسدیمان-لوله حاوی EDTA

اسلاید 22: برچسب­گذاري ظرف حاوی نمونهبلافاصله پس از اتمام نمونه‌گيري بايد برچسب دارای اطلاعات زير را بر روي لوله‌ها و ظروف حاوي نمونه خون بيمار الصاق نمود: - نام، نام خانوادگي بيمار، شماره شناسايي، تاريخ، زمان نمونه­گيري (بخصوص در آزمايش­های رديابي دوز درماني داروها TDM)، نام فرد خون‌گير-در بطری محیط کشت BACTECتوجه شود از آلودگی بدنه ظرف یا نوشتن روی برچسب در محل بارکد اجتناب شود.

اسلاید 23: عوارض فلبوتومی

اسلاید 24: روشهای جلوگیری از هماتوم: تنها دیواره بالایی ورید باید سوراخ شود.درصورت عبور سرسوزن از دیواره پایینی رگ، خون به بافت اطراف نفوذ کرده سبب هماتوم در ناحیه می شود.قبل از خارج ساختن سوزن حتما باید تورنیکت باز شود.از وریدهای سطحی اصلی باید استفاده شود.پس از نمونه گیری باید به محل بانداژ یا گازنمونه گیری فشار اندکی وارد آید.

اسلاید 25: روشهای جلوگیری از همولیز: موضع نمونه گیری بایدپس از ضدعفونی کردن در مجاورت هوای محیط خشک شود.بهتر است از سرسوزن با اندازه کوچک استفاده نشود.از محل هماتوم نمونه گیری نشود.باید سوزن کاملا به سرنگ متصل باشد تا هیچگونه حباب هوا هنگام نمونه گیری تشکیل نشود.پیستون سرنگ باید به آرامی به عقب کشیده شود.نمونه هایی که در لوله های حاوی ماده ضدانعقاد ریخته می شود باید بلافاصله و به آرامی 10-5 بار مخلوط شود. درصورتیکه نمونه در لوله بدون ماده ضدانعقاد ریخته شود باید به آرامی به جدار داخلی لوله منتقل و تخلیه گردد.

اسلاید 26: درپوش: نمونه­ها بايد در طول مدت انتقال و نگه­داري در ظروف درپوش­دار قرار گيرند. عدم وجود درپوش باعث خطا در نتايج بعضي متغيرها به­دليل از دست دادن دي اکسيد کربن و افزايش PH نظير کلسيم يونيزه و اسيد فسفاتاز (افزايش مي­يابند) مي­گردد.هم­چنين وجود درپوش خطر ايجاد آئروسل، تبخير نمونه و آلودگي را نيز کاهش مي­دهد.

اسلاید 27: جمع­آوري نمونه در محل آزمايشگاه زمان: نمونه­ها بايد در ظروف در بسته مناسب در کوتاه­ترين زمان ممکن به آزمايشگاه ارسال گردند. انتقال نمونه­ها می­بايست در شرايط دماي اتاق صورت گيرد، به­جز نمونه­هايي که بايد با حفظ زنجيره سرد نگه­داري و منتقل شوند. انتقال سريع نمونه از محل نمونه­گيري به آزمايشگاه در شرايطي که دماي محل نمونه­گيري بالاتر از C22 است از اهميت زيادي برخوردار است. 

اسلاید 28: جداسازی سرمنمونه خون پس از جمع­آوري (در ظروف در بسته)، بايد جهت جداسازي و سانتريفیوژ مراحل لخته شدن را طي نمايد که بهتر است اين مرحله با طي زمان و به­طور خودبخود صورت گـيرد. عمـل لخته شدن به­طور طبيعي در دماي اتاق (C25-22) پس از 60-30 دقيقه کامل مي­گردد. در صورتي که بيمار داروهاي ضد انعقاد مصرف نمايد، زمان لخته طو لانی تر میشود

اسلاید 29: تهيه پلاسمالـولـه­هـاي حاوي خون به همراه مواد افزودني به­جز سيترات سديم بايد پس از نمونه­گيري به آرامي براي حداقل 10-5 بار جهت مخلوط شدن سر و ته گردند (به­جز موارد خاص کـه بايـد مطابق دستورالعمل سازنده لوله عمل گردد). لوله­هاي حاوي سيترات سديم و خون بايد 4-3 مرتبه سر و ته گردند.

اسلاید 30: هموليز:حمل و نقل نمونه بايد به آرامي صورت گيرد تا امکان آسيب به گلبول­های قرمز را به حداقل رساند. وجود هموليز در نمونه سبب تداخل با عملکرد برخي دستگاه­هايي می­شود که به روش نوري پارامترها را اندازه­گيري مي­کنند. ترکيبات زيادي در سرم و پلاسما تحت تاثير هموليز (با منشا خارجي) قرار مي­گيرند .

اسلاید 31: پارامترهايي که شديدا تحت تاثير هموليز قرار گرفته و افزايش مي­يابند:هموگلوبين پلاسما آسپارژين امينو ترانسفراز (AST)پتاسيمدهيدروژناز لاکتات

اسلاید 32: پارامترهايي که به­طور قابل توجهي تحت تاثير هموليز قرار مي­گيرند :آهن (افزايش مي­يابد) آلانين امينو ترانسفراز (افزايش مي­يابد) T4 (کاهش مي­يابد):

اسلاید 33: پارامترهايي که کمتر تحت تاثير هموليز قرار گرفته ولی امکان افزايش آن­ها به دنبال هموليز وجود دارد:فسفر پروتئين توتال آلبومين منيزيم کلسيماسيد فسفاتاز

اسلاید 34: مجاورت با نورنمونه نبايد در مقابل نور خورشيد قرار گيرد اين امر بخصوص در مورد ترکيباتي که به نور خورشيد يا اولترا ويوله بسيار حساس هستند نظير بيلي­روبين، ويتامين A و B6 و بتا کاروتن بسيار اهميت دارد. ظرف حاوی اين نمونه­ها جهت محافظت از نور بايد در پوششي از کاغذ آلومنييوم پيچيده شده يا درظرف شيشه­اي قهوه­اي نگه­داری شوند. 

اسلاید 35: معيارهاي رد نمونه خون  مشخصات ناکافي از بيمار يا نوع آزمايش (نظير عدم وجود برچسب يا برچسب با اطلاعات ناقص)  حجم ناکافي  نشت نمونه به خارج از ظرف استفاده از لوله نامناسب جمع­آوري نمونه ضد انعقاد نامناسب (مثلا فلورايد سديم در اندازه­گيري اوره با روش اوره­آز تداخل مي­کند)  ترتيب نادرست جمع­آوري نمونه در صورتي که در طی يک بار نمونه­گيری از لوله­هاي متعدد خلاء استفاده شود. وجود هموليز يا ليپمي  نگه­داري و انتقال نمونه در دمای نامناسب وجود لخته در نمونه­هاي جمع­آوري شده با ماده ضد انعقاد عدم تطابق برگه درخواست آزمايش با نوع نمونه و مشخصات آن

اسلاید 36: تهيه نمونه جهت کشت خونضروري است دقت بيشتري جهت ضد عفوني­كردن محل نمونه‌گيري صورت گيرد. ابتدا موضع با الـكل 70% تميز شـده سپس با محلول povidine–iodine 10-1% (يا كلرهگزيدين گلوكونات) ضد عفوني شـده و پـس از خشـك شـدن مـوضـع مجددا جهت حذف يد و كلرهگزيدين با الكل تميز مي­گردد. کلرهگزيدين گلوكونات جهت نوزادان دو ماهه و بزرگ­تر و هم­چنين بزرگسالان داراي حساسيت نسبت به يد پيشنهاد مي‌گردد. به­دنبال خون‌گيري بايد خون در عرض 1 دقيقه به محيط کشت تلقيح شود..

اسلاید 37: درب شيشه‌هاي كشت خون نيز بايد قبل از تلقيح با الکل 70% و سپس با محلول povidine–iodine 10-1% (بتادين) ضدعفوني گردد.محيط کشت تلقيح شده را چندین بار تکان داده، بلافاصله به آزمايشگاه منتقل شده و در انکوباتور C35 قرار داده شود. مناسبترین زمان قبل یا هنگام اوج تب ونیز قبل از تجویز آنتی بیوتیک می باشد._ .

اسلاید 38: اگرلازم باشد از بیمار درحال درمان نمونه گیری شود زمان مناسب زمانی است که غلظت آنتی بیوتیک حداقل است. در مواردی که علت تب ناشناخته است(FUO ) و عفونتهای تحت حاد گرفتن سه نمونه کشت خون با حداکثر حجم ممکن توصیه می شود.درمورد شرایط حاد مانند مننژیت ،پنومونی ، پیلونفریت و ... قبل از شروع درمان دو نمونه با حداکثر حجم ممکن اخذ شود و نیازی به تکرار خونگیری بعد از شروع درمان(حین تب)نیست.

اسلاید 39: نمونه کشت خون برای سیستم bactecسیستم حساس تر از کشت خون معمولی است لذا رعایت استریلیتی حین نمونه گیری الزامی است.حجم محیط کشت اطفال از محیط کشت بزرگسال بیشتر است وبا تزریق 10 میلی لیتر خون در محیط کشت بزرگسال و1/5 تا 3 میلی لیتر خون حجم نهایی هر ذو یکسان است .به علت داشتن رزین قابلیت خنثی سازی آنتی بیوتیک ها را دارد ولی باز هم فاصله زمانی از دوز آنتی بیوتیک مهم است وباید نیم ساعت قبل از دوز آخر نمونه گیری شود.

اسلاید 40: حجم خون مورد نياز  کـودکـان: حجم 3-1 ميلي­ليتر خون کـافـي است. اين مقدار خون در 20 ميلي­ليتر محيط کشت خون رقيق مي­گردد. بزرگسالان: حجم خون جمع­آوري شده به ميزان 10-5 ميلي­ليتر است که در 50 ميلي­ليتر از محيط کشت خون رقيق مي­گردد.یادمان باشد حجم نمونه مهمتر از زمان نمونه گیری است و هر قدر حجم نمونه بیشتر ،احتمال نتیجه مثبت بیشتر است.

اسلاید 41: نمونه های دیگر:ادرار -مدفوع -مایعات

اسلاید 42: ادرارنمونه ادرار بايد در ظرف تميز دهان گشاد با قطر حداقل 5سانتي­متر، با اندازه مناسب و غير قابل نشت، جمع­آوري گردد. بهتر است ظرف جمع­آوری ادرار يک­بار مصرف بوده و درغير اينصورت عاري از هرگونه آلودگي با مواد شوينده باشد. جهت بررسيهاي معمول و ميکروبيولوژيک نمونه ادرار بايد حداکثر تا دو ساعت پس از جمع­آوري (در دماي اتاق) مورد بررسي قرار گيرد. پس از اين مدت ترکيبات شيميايي ادرار تغيير کرده و عناصر تشکيل دهنده آن شروع به تخريب مي­کنند

اسلاید 43: ادرار 24 ساعته  جمع آوری نمونه: ظرف نمونه بايد پلاستيکي و دهان گشاد به گنجايش تقريبي 3 ليتر باشد.جهت جمع­آوري نمونه ادرار 24 ساعته ابتدا اولين ادرار صبحگاهي دور ريخته شده و در طي 24 ساعت بعدي ادرار در ظرف نمونه­گيري جمع­آوري مي­شود به­طوري كه آخرين نمونه جمع­آوري شده، اولين نمونه صبحگاهي روز بعد (در همان ساعت تخليه مثانه روز قبل) باشد.

اسلاید 44: مدفوع  بيمار نبايد از 15 روز قبل از نمونه­گیری آنتي­بيوتيک (نظير تتراسايکلين و سولفاناميد)، داروهاي ضد تک­تاخته، بيسموت، سولفات باريم، ترکيبات کائولين، روغن کرچک، هيدروکسيد منيزيم يا هرگونه داروي ملين مصرف کرده بانبايد در یک روز بيش از يك نوبت نمونه از بيمار گرفته شود. نمونه­گيری در بيمارانی که بيش از سه روز بستری شده­اند توصيه نمی­شود.

اسلاید 45: مايع مغزي نخاعي (Cerebro-Spinal Fluid –CSF)معمولا مايع جهت آزمون­هاي شيميايي، ميکربيولوژيک و آناليز سلولي در 3 تا 4 لوله جمع آوری می­شود.جهت آزمون­هاي باکتري­شناسي نمونه بايد در لوله درپوش­دار و استريل جمع­آوري گردد. لوله­ها بر اساس ترتيب جمع­آوري برچسب­گذاري مي­شوند (لوله شماره 1 جهت آزمايش­هاي بيوشيميايي، لوله شماره 2 جهت آزمايش­هاي ميکروب­شناسي، لوله شماره 3 جهت بررسي سلولي).

اسلاید 46: جهت جمع­آوري نمونه نيازي به ماده ضد انعقاد نمی­باشد زيرا مايع مغزي نخاعي لخته نمي­شود، بـايد در اسرع وقت به آزمايشگاه ارسال گردد. دژنراسيون سلولي در طي يک ساعت اتفاق مي­افتد، لذا حداکتر زمان گردش کاري نبايد بيش از 1 ساعت به طول انجامد. نقل و انتقال نمونه در دماي اتاق صورت مي­گيرد. جهت آزمون­هاي باکتریولوژيک نبايد نمونه در يخچال نگه­داري شود. از قرار دادن نمونه در معرض نور خورشيد و گرما بايد خودداري نمود

اسلاید 47: تستهای بیوشیمیایی مایعات آنالیز مایعات شامل شمارش سلولی وافتراقی – قند وپروتئین است.بقیه تستهای بیوشیمیایی مانند لاکتات-LDH-TG-UREA-CREATININEوADA باید با کد اختصاصی مربوط به خود پذیرش شوند .برای اندازه گیری لاکتات سریع رسیدن نمونه ومانده نبودن بسیار مهم است.برای تستهای میکروبیولوژیک نمونه در سرنگ یا ظرف استریل فرستاده شود

اسلاید 48: نمونه مایعات برای سیتولوژینمونه جداگانه به همراهی پرونده بیمارلازم است .سریعا باید به بخش پاتولوژی رسانده شود چون در اثر ماندن سلولها دژنره می شوند.از افزودن فرمالین خودداری شود.

اسلاید 49: نمونه­هاي دستگاه تنفسي­ بهترين زمان جمع­آوري نمونه در اکثر عفونت­هاي تنفسي در طول 3 روز او بيمار صبح ناشتا در فضاي باز ابتدا يک نفس عميق کشيده و با سرفه­هاي عميق خلط را درون ظرف (در حالي که ظرف نزديک لب­هاي بيمار قرار دارد) تخلیه می­کند. سپس درب آن را بسته و در کيسه نايلوني قرار می­دهد. بهتر است حجم خلط بين 5-3 ميلي­ليتر باشد.

اسلاید 50: : 4C شرايط نگه­داری نمونه - دمای نوک کاتتر (IV)مايع مغزی نخاعی جهت شناسايی ويروسگوش خارجیمدفوع (بدون نگه­دارنده)مدفوع جهت توکسين کلسترديوم دیفیسيل تا 3 روز(بيشتر از 3 روز نگه­داری در C70-)خلطادرار (بدون نگه­دارنده)

اسلاید 51: شرايط نگه­داری نمونه -دمای اتاق 26-22درجه آبسه- زخم- ضايعهمايعات بدنمايع مغزی نخاعی جهت شناسايی باکتریگوش داخلیمدفوع (با ماده نگه­دارنده)تناسلیبينی- نازوفارنکس – گلوبافت(ادرار (با ماده نگه­دارنده

اسلاید 52: موارد رد نمونه در بخش میکربشناسی عدم هم­خوانی اطلاعات برگه درخواست آزمايش و برچسب روی نمونه استفاده از محيط انتقالی نامناسب جمع­آوری نمونه در ظرفی که دارای نشت است نمونه ناکافی زمان انتقال بيش از 2 ساعت در نمونه­های بدون مواد نگه­دارنده

اسلاید 53:  انتقال نمونه در دمای نامناسب خشک شدن نمونه دريافت نمونه در محلول فيکساتيو نظير فرمالين (نمونه مدفوع مستثنی می­باشد) درخواست کشت بی­هوازی بر روی نمونه­هايی که باکتری­های بی­هوازی فلور طبيعی آنهاست. (مثل واژن، دهان) نمونه حاصل از کاتتر فولی

اسلاید 54:  بيش از يک نمونه با يک منشا از يک مريض در همان روز (به­غير از موارد کشت خون)  نمونه سواپ با درخواست­های متعدد برای ارگانيسم­های مختلف نمونه خلط که در رنگ­آميزی گرم کمتر از 25 سلول سفيد و بيش از 10 سلول اپی­تليال در بزرگ­ نمايی پايين .داشته باشد

اسلاید 55: Thanks for your attentio